System NovaSeq – nowa era w sekwencjonowaniu następnej generacji
System do sekwencjonowania NovaSeq firmy Illumina to urządzenie do sekwencjonowania w szerokim zakresie zastosowań. System NovaSeq 6000 zapewnia aplikacje z jeszcze wyższą wydajnością przy najniższych kosztach na próbkę. Seria NovaSeq zapewnia olbrzymią skalowalność i elastyczność, aby dostosować się do różnorodnych zastosowań i rozmiarów projektów przy jednoczesnym osiągnięciu maksymalnej wydajności. System wykorzystuje technologię sekwencjonowania przez syntezę (sequencing by synthesis – SBS) oraz technologię uporządkowanego wzoru flow cell. Umożliwia analizę jednej lub dwóch flow cell jednocześnie i wybór pomiędzy czterema rodzajami flow cell.
Seria NovaSeq jest kompatybilna z szerokim wachlarzem zestawów do przygotowania bibliotek Illumina, od sekwencjonowania transkryptów do sekwencjonowania całych genomów. Dzięki zwiększonej przepustowości i obniżonej cenie na próbkę, seria NovaSeq jest idealna do zastosowań wymagających analizy dużej ilości danych. Seria NovaSeq łączy cechy, które sprawiają, że sekwenatory stacjonarne są łatwe w obsłudze, zapewnia w pełni zautomatyzowane generowanie klastrów. Zintegrowane, gotowe do użycia wkłady odczynników usprawniają konfigurację i zapobiegają niewłaściwemu ładowaniu. Materiały eksploatacyjne kodowane przez RFID umożliwiają w pełni zautomatyzowaną identyfikację odczynników. W sumie potrzeba zaledwie kilku minut na uruchomienie systemu NovaSeq 6000, co zwiększa wydajność laboratorium.
NovaSeq 6000 System | |||||
---|---|---|---|---|---|
Typ Flow Cell | SP * | S1 | S2 | S4 | |
2 x 50 pz | 65–80 Gb | 134-167 Gb | 333-417 Gb | ND ** | |
2 x 100 pz | ND ** | 266-333 Gb | 667-833 Gb | 1600-2000 Gb | |
2 x 150 pz | 200-250 Gb | 400-500 Gb | 1000-1250 Gb | 2400-3000 Gb | |
2 x 250 pz | 325-400 Gb | ND ** | ND ** | ND** | |
* Podane wartości zostały określone dla biblioteki kontrolnej Illumina PhiX przy rekomendowanych gęstościach klastrów. ** ND – nie dotyczy |
NovaSeq 6000 System | |||||
---|---|---|---|---|---|
Typ Flow Cell | SP * | S1 | S2 | S4 | |
Odczyty pojedyncze | 600-800 milionów | 1,3-1,6 miliarda | 3,3-4,1 miliardów | 8-10 miliardów | |
Odczyty sparowanych końców | 1,3-1,6 miliarda | 2,6-3,2 miliardy | 6,6-8,2 miliardów | 16-20 miliardów |
NovaSeq 6000 System | |||||
---|---|---|---|---|---|
Typ Flow Cell | SP * | S1 | S2 | S4 | |
Jakość odczytów | |||||
2 x 50 pz | ≥ 85% par zasad powyżej Q30 przy 2 × 50 pz | ||||
2 x 100 pz | ≥ 80% par zasad powyżej Q30 przy 2 × 100 pz | ||||
2 x 150 pz | ≥ 75% par zasad powyżej Q30 przy 2 × 150 pz | ||||
2 x 250 pz | ≥ 75% par zasad powyżej Q30 przy 2 × 250 pz | ||||
Czas reakcji | |||||
2 x 50 pz | ~13 godz. | ~13 godz. | ~16 godz. | ND | |
2 x 100 pz | ND | ~19 godz. | ~25 godz. | ~36 godz. | |
2 x 150 pz | ~25 godz. | ~25 godz. | ~36 godz. | ~44 godz. | |
2 x 250 pz | ~38 godz. | ND | ND | ND | |
* Wskaźnik jakości Q-score określa prawdopodobieństwo wystąpienia błędu podczas identyfikacji nukleotydów. Procent par zasad > Q30 został uśredniony z całego odczytu. Przedstawione wartości Q-score zostały określone dla biblioteki kontrolnej Illumina PhiX z wykorzystaniem odczynników NovaSeq Reagent Kits i sekwenatora NovaSeq 6000. Dobór parametrów może się różnić w zależności od typu i jakości biblioteki, rozmiaru insertu, stężenia próbek i innych czynników ** Czas trwania reakcji obejmuje generację klastrów, sekwencjonowanie oraz identyfikację nukleotydów. Czas reakcji określono dla odczytów 2 flow cells tego samego typu; pomiar dwóch różnych flow cells zmienia czas reakcji. |
NovaSeq 6000 System | |||||
---|---|---|---|---|---|
Typ Flow Cell | SP * | S1 | S2 | S4 | |
Ludzkie genomy/reakcja | ~4 | ~8 | ~20 | ~48 | |
Exomy/reakcja | ~40 | ~80 | ~200 | ~500 | |
Transkryptomy/reakcja | ~32 | ~64 | ~164 | ~400 | |
* Podane wartości są szacunkowe i zostały określone na podstawie podwójnego odczytu flow cell. Ludzkie genomy przyjmują >120 Gz danych w próbce, aby osiągnąć 30× pokrycie genomu. Exomy ok. 8 Gz/100×. Transkryptomy zakładają ≥50 mln odczytów. Wydajność może się różnić w zależności od użytego zestawu do przygotowania biblioteki. |